Способ автоматизированной морфометрической диагностики миелофиброза



Способ автоматизированной морфометрической диагностики миелофиброза
Способ автоматизированной морфометрической диагностики миелофиброза
Способ автоматизированной морфометрической диагностики миелофиброза
Способ автоматизированной морфометрической диагностики миелофиброза
Способ автоматизированной морфометрической диагностики миелофиброза

 


Владельцы патента RU 2552928:

Федеральное государственное бюджетное учреждение "Научно-исследовательский институт региональной патологии и патоморфологии" Сибирского отделения Российской академии медицинских наук (RU)

Изобретение относится к медицине, а именно к способу автоматизированной морфометрической диагностики миелофиброза. Сущность способа состоит в том, что выполняют обзорные изображения биологической ткани с выделением на таких изображениях зон с различными оптическими свойствами c определяемыми фиброзными и гемопоэтическими свойствами биологической ткани. Рассчитывают отношения площадей этих зон как минимум трех парафиновых срезов трепанобиоптантов. Вычисляют коэффициент (Коп) как отношение площади фиброзной ткани к площади гемопоэтической ткани по формуле. При значении Коп≥14,5% диагностируют миелофиброз. Использование заявленного способа позволяет повысить точность и улучшить оперативность диагностики миелофиброза. 6 з.п. ф-лы, 1 табл., 4 ил., 1 пр.

 

Изобретение относится к медицине, в частности к гематологии, а именно к клиническим методам исследования с помощью автоматизированных морфометрических методов (в том числе с применением компьютеров), и может быть использовано для диагностики поражения фиброзной тканью, в частности, костномозговой ткани (миелофиброз).

В последние годы, благодаря разработке и использованию в клинической практике новых лекарственных препаратов, трансплантации гемопоэтических стволовых клеток и многих других современных методов лечения, удалось существенно увеличить общую выживаемость больных с опухолевыми заболеваниями, в частности кроветворной ткани. Очевидно, что с увеличением продолжительности жизни онкологических пациентов существенно повышается роль надежной качественной диагностики злокачественных новообразований.

Известны обычные методы диагностики миелофиброза с помощью трепанобиопсии костного мозга. Шкала, принятая на Европейском консенсусе в 2005 г. (Thiele J., Kvasnicka Η.Μ, Facchetti F. et al. European consensus for grading of bone marrow fibrosis and assessment of cellularity // Haematilogica. - 2005. - 90:1128 - 1132), позволяет провести качественную и полуколичественную оценку миелофиброза. Качественная оценка миелофиброза заключается в дифференцировке между ретикулином и коллагеном, полуколичественная оценка связана с определением плотности ретикулинового волокна.

Также известен способ количественной автоматизированной оценки миелофиброза при миелопролиферативных заболеваниях, который заключается в определении среднего процентного содержания черных пикселей в 3-х гемопоэтических площадях по 0,5 мм2 (Teman J. Сarolin, 2010).

Однако известные методы диагностики миелофиброза не дают достаточной точности и оперативности получения соответствующих результатов.

Известен также способ диагностики воспалительной патологии верхнечелюстных пазух (патент РФ на изобретение №2234859, публикация от 27.04.2004), который, в частности, включает в себя выполнение обзорных рентгенограмм околоносовых пазух в носоподбородочной проекции, отличающийся тем, что на рентгенограмме выделяют ″зоны интереса″, соответствующие рентгенологическим контурам верхнечелюстной пазухи и одноименной орбиты, строят гистограммы и рассчитывают коэффициент плотности (Кп) как отношение плотности верхнечелюстной пазухи, выраженной в единицах шкалы серого цвета, к плотности одноименной орбиты, выраженной в единицах шкалы серого цвета, причем при ″одногорбой″ кривой зоной интереса является рентгенологический контур всей верхнечелюстной пазухи, а при наличии ″многогорбой″ кривой зонами интереса являются участки пазухи с различной плотностью.

Известный метод, вследствие использования, в частности, рентгеновской техники, также не обладает высокой точностью и достаточной оперативностью диагностики.

Наиболее близким к заявляемому изобретению выявлено решение, известное из публикации (Домникова Н.П. и др. Структурный анализ трепанобиоптантов при агрессивных и индолентных неходкинских лимфомах // Фундаментальные исследования, №9, 2001, с. 27-61 (стр. 58 1 и 2 колонка)), которое, в частности, характеризуется тем, что в нем определяется относительная площадь опухолевой ткани при различных типах лимфомной инфильтрации костного мозга при агрессивных и индолентных неходжкинских лимфомах, что, во всяком случае, облегчает диагностику миелофиброза.

Основным недостатком известного метода, принятого за прототип, является отсутствие возможности автоматизированной морфометрической диагностики миелофиброза, затрудняющее повышение точности постановки соответствующего диагноза.

Целью заявляемого изобретения является устранение указанных выше недостатков и достижение таких технических результатов, как повышение точности и улучшение оперативности диагностики миелофиброза, в частности как при первичном миелофиброзе (хронический идиопатический миелофиброз), так и вторичном миелофиброзе, который развивается при: 1) онкогематологических заболеваниях (истинная полицитемия, эссенциальная тромбоцитемия, хронический миелолейкоз, волосатоклеточный лейкоз, реже - острый лейкоз, миелодиспластический синдром, неходжкинские лимфомы, лимфома Ходжкина, множественная миелома); 2) солидных опухолях с метастазами в костном мозге (рак молочной железы, легких, предстательной железы); 3) диффузных заболеваниях соединительной ткани (системная красная волчанка, системная склеродермия).

Указанная цель достигается тем, что способ автоматизированной морфометрической диагностики миелофиброза, включающий выполнение обзорных изображений биологической ткани, выделение на таких изображениях зон с различными оптическими свойствами, определяемыми фиброзными и гемопоэтическими свойствами биологической ткани, и выполнение расчета отношения площадей этих зон, характеризуется в том числе тем, что обзорные изображения выполняют путем формирования как минимум трех парафиновых срезов трепанобиоптатов, полученные срезы обрабатывают следующим образом: первый импрегнируют серебром по методу Гомори, второй окрашивают по методу ван Гизона и третий окрашивают гематоксилином и эозином, полученные таким образом обзорные изображения подвергают фиксации и анализу так, что в результате этого анализа получают величину площади зон, окрашенных в черный и розовый цвета, соответствующих фиброзной ткани, и величину площади зон, окрашенных в синий и бледно-розовый цвета, соответствующих гемопоэтической ткани; затем вычисляют коэффициент относительной площади как отношение площади фиброзной ткани к площади гемопоэтической ткани по формуле:

где:

Коп - коэффициент относительной площади (в процентах);

Sчepн - площадь зоны ткани, окрашенной в черный цвет;

Sроз - площадь зоны ткани, окрашенной в розовый цвет;

Sбл-роз - площадь зоны ткани, окрашенной в бледно-розовый цвет;

Sсин - площадь зоны ткани, окрашенной в синий цвет,

причем при значении Коп≥14,5% диагностируют миелофиброз.

Способ автоматизированной морфометрической диагностики миелофиброза может характеризоваться тем, что парафиновые срезы трепанобиоптатов формируют толщиной 4 мкм.

Способ автоматизированной морфометрической диагностики миелофиброза может характеризоваться тем, что фиксация обзорных изображений парафиновых срезов осуществляется с помощью цветной фотовидеокамеры.

Способ автоматизированной морфометрической диагностики миелофиброза может характеризоваться тем, что величину площади зон, окрашенных в черный и розовый цвета, соответствующих фиброзной ткани, и величину площади зон, окрашенных в синий и бледно-розовый цвета, соответствующих гемопоэтической ткани, получают с помощью источника света и соответствующих RGB датчиков определения цвета, так что площадь окрашенных зон соответствует электрическому напряжению на выходе цветовых датчиков.

Способ автоматизированной морфометрической диагностики миелофиброза может характеризоваться тем, что площадь окрашенных зон получают с помощью установленного в цепи после RGB датчиков цифрового сигнального процессора.

Способ автоматизированной морфометрической диагностики миелофиброза может характеризоваться тем, что анализ для получения величин площадей окрашенных зон производят с помощью компьютеризированного микроскопа.

Способ автоматизированной морфометрической диагностики миелофиброза может характеризоваться тем, что в качестве источника света используют RGB светодиодный источник света.

В отдельных случаях поставленная задача, например, решается тем, что выявление данных показателей миелофиброза осуществляется с использованием программы анализа изображений AxioVision 4.6, применяя, например, цветную пятимегапиксельную фото/видео камеру AxioCam, микроскоп Zeiss и стандартный компьютер. В парафиновых срезах трепанобиоптатов, например, подвздошной кости, толщиной 4 мкм, импрегнированных серебром по методу Гомори и окрашенных по методу ван Гизона, при увеличении 200 измеряют абсолютную площадь фиброзной (коллагеновой и ретикулиновой) ткани и гемопоэтической ткани. Изучаются все костномозговые полости одного среза, что соответствует 5-7 полям зрения микроскопа и 20-30 полям зрения камеры (в зависимости от размера среза). Площадь одного поля зрения камеры известна и составляет 364000 мкм2 (0,7 мм2). Сложив площадь фиброзной ткани во всех полях зрения камеры, получают суммарную абсолютную площадь фиброзной ткани в пределах одного среза. Аналогичным образом получают суммарную абсолютную площадь гемопоэтической ткани. Затем вычисляют процент площади фиброзной ткани от гемопоэтической ткани (Коп). Коп отражает выраженность миелофиброза.

Зачастую задачей соответствующей диагностики является расширение возможностей оценки миелофиброза с целью определения такого весьма значимого показателя, как угнетение эритроидного ростка. Состояние эритроидного ростка оценивается в срезах, окрашенных гематоксилином и эозином.

Предлагаемым способом исследованы, к примеру, трепанобиоптаты подвздошной кости 30 пациентов с диффузной В-крупноклеточной лимфомой (ДВККЛ): 20 мужчин, 10 женщин, от 21 до 59 лет, средний возраст - 50,36±14,31 лет, 30 пациентов с хроническим лимфолейкозом (ХЛЛ) и неходжкинскими лимфомами из малых лимфоцитов с опухолевым поражением костного мозга (НХЛ из малых лимфоцитов): 18 мужчин, 12 женщин, от 44 до 78 лет, средний возраст - 59,13±9,57 лет, 10 пациентов с множественной миеломой (ММ): 5 мужчин, 5 женщин, от 50 до 68 лет, средний возраст - 59,67±6,58 лет, находившихся на лечении в ГБУЗ НСО «Государственная Новосибирская областная клиническая больница» с 2010 по 2012 годы.

Диагноз лимфомы устанавливали в соответствии с классификацией REAL (1994) и ВОЗ (2008), диагноз хронического лимфолейкоза устанавливали на основании классификации Binet (Binet J.L. et. al., 1981). Для верификации диагноза множественной миеломы использовали критерии Y. Huang и соавт. (Huang Y.W. etal.,1 999).

В первую группу вошли срезы 14 трепанобиоптатов, в которых отмечался, скорее всего, только ретикулиновый миелофиброз, во вторую группу - срезы 13 трепанобиоптатов, где наблюдался, вероятнее, только коллагеновый миелофиброз, в третью - срезы 15 трепанобиоптатов, в которых с наибольшей достоверностью был выявлен как коллагеновый, так и ретикулиновый миелофиброз. В остальных 28 трепанобиоптатах - фиброзная ткань не обнаружена. Оценка выраженности миелофиброза осуществлялась в каждой группе.

В Таблице представлен пример показателей миелофиброза, ассоциированных с гипоплазией эритроидного ростка, в частности приведены данные результатов автоматизированной морфометрической оценки миелофиброза при лимфопролиферативных заболеваниях, выявлены показатели, которые ассоциированы с угнетением эритроидного ростка.

Данные таблицы позволяют сделать вывод о том, что к таким показателям относятся: в первой группе - Коп ≥36,7%, во второй группе - Коп ≥22,5%, в третьей группе Коп - ≥14,5%. Таким образом, реализация способа, в части указанных значений, таких как Коп >14,5%, может быть использована в диагностике миелофиброза, без четкого его разделения на группы.

На Фиг. 1 схематично показан пример выполнения установки для анализа парафиновых срезов трепанобиоптата по заявленному способу. На Фиг. 2, Фиг. 3 и Фиг. 4 изображены увеличенные в 200 раз фотоотпечатки парафиновых срезов трепанобиоптата подвздошной кости, подлежащих такому анализу с целью диагностирования поражения ткани миелофиброзом. На представленных фигурах цифрами обозначено следующее:

1. Источник света.

2. Фотоотпечаток препарат среза трепанобиоптата.

3. Рамка фотоотпечатка.

4. Направление света, прошедшего через фото препарата.

5. Матрица датчиков определения цвета.

6. Соединительные разъемы.

7. Цифровой сигнальный процессор.

8. Индикатор.

9. Зоны черного окраса.

10. Зоны розового окраса.

11. Зона ярко-розового окраса.

12. Зона бледно-розового окраса.

13. Зона синего окраса.

В представленном примере величину площадей искомых зон в парафиновых срезах трепанобиоптата определяют следующим образом. Полученные стандартным образом три парафиновые среза трепанобиоптата, например, подвздошной кости, толщиной 4 мкм, последовательно обрабатывают так: первый импрегнируют серебром по методу Гомори, второй окрашивают по методу ван Гизона и третий окрашивают гематоксилином и эозином. Полученные таким образом обзорные изображения фотографируют, тем самым фиксируя полученные окрашенные в различные цвета зоны.

С помощью источника света 1, например в виде матрицы светодиодов, поток белого света направляют на фотоотпечаток препарат среза трепанобиоптата 2, установленный в рамке 3. Далее, проходя через фотоотпечаток препарат среза трепанобиоптата 2, поток света окрашивается в цвета, соответствующие цветам выбранного для анализа фотоотпечатка препарата среза трепанобиоптата 2 по направлению 4, и попадает на RGB матрицу электронных датчиков определения цвета 5 (например, цифровых). На выходе матрицы электронных датчиков определения цвета 5 образуется электрическое напряжение (Ur, Ug, Ub), пропорциональное потокам света соответствующих цветов. С помощью соединительных разъемов 6 выходы матрицы электронных датчиков определения цвета 5 соединяют, в частности, с цифровым сигнальным процессором, с помощью которого определяются площади окрашенных зон анализируемого фотоотпечатка препарата среза трепанобиоптата, на основе пропорциональности от выходных напряжений соответствующих цветов (UR, UG, UB), результаты определения искомых площадей считывают с индикатора 8, например, в виде монитора.

Все три анализируемые среза отделены от исследуемого образца подвздошной кости подряд один за другим, а учитывая, что толщина среза не превышает нескольких единиц микрон, они могут быть признаны практически идентичными препаратами. Первый препарат парафинового среза трепанобиоптата (Фиг. 2) импрегнируют серебром, при этом в черный цвет окрашивается ретикулиновая ткань (зона черного окраса 9). Второй препарат парафинового среза трепанобиоптата (Фиг. 3) окрашивают по методу ван Гизона, при этом коллагеновая ткань окрашивается в розовый цвет (зона розового окраса 10). Третий препарат парафинового среза трепанобиоптата (Фиг. 4) обрабатывают гематоксилином и эозином, при этом гемопоэтическая ткань окрашивается в бледно-розовый (цитоплазма) (зона бледно-розового окраса 12) и в синий (клеточные ядра) (зона синего окраса 13). Костная ткань в препаратах, окрашенных по ван Гизону и гематоксилином-эозином, имеет ярко-розовый оттенок (зона ярко-розовой ткани 11), площадь фиброзной ткани определяется суммой площадей зон черного окраса 9 и зон розового окраса 10. Площадь гемопоэтической ткани определяется суммой площадей зон синего 12 и бледно-розового 13 окрасов.

Далее, для получения окончательного искомого диагноза поражения исследуемого образца миелофиброзом вычисляют коэффициент относительной площади (в процентах) по представленной в заявляемом изобретении формуле. Пусть в предложенном примере Коп, рассчитанный для срезов трепанобиоптата, в которых отмечался только ретикулиновый миелофиброз, равен 37%, тогда по приведенным выше нормативам этот показатель является значимым для угнетения эритроидного ростка. В срезах трепанобиоптатов только с коллагеновым миелофиброзом значимым для угнетения эритроидного ростка является Коп, например, 23%. В срезах как с ретикулиновым, так и с коллагеновым миелофиброзом значимым для угнетения центрального звена эритрона является, например, Коп 15%. Таким образом, при получении Коп ≥14,5% во всяком случае со всей очевидностью диагностируется миелофиброз, хотя бы и без однозначного разделения его на группы.

Высокая точность заявляемого метода обеспечивается применением автоматизированной оценки малых величин отклонения величин площадей фиброзной и гемопоэтической тканей, а оперативность улучшается вследствие применения автоматизированного (компьютерного) способа определения соотношения указанных площадей.

Таким образом, заявленный способ, основанный на автоматизированном морфометрическом исследовании, позволяет при неходжкинских лимфомах, хроническом лимфолейкозе, множественной миеломе и других заболеваниях осуществлять точную и оперативную диагностику миелофиброза.

Заявляемый способ является вполне промышленно применимым, так как он не требует какого-либо специфического сложного технического оборудования, кроме стандартного набора медицинской и компьютерной техники, что позволяет с успехом широко внедрять его в клиниках, исследовательских и учебных учреждениях.

1. Способ автоматизированной морфометрической диагностики миелофиброза, включающий выполнение обзорных изображений биологической ткани, выделение на таких изображениях зон с различными оптическими свойствами, определяемыми фиброзными и гемопоэтическими свойствами биологической ткани, и выполнение расчета отношения площадей этих зон, отличающийся тем, что обзорные изображения выполняют путем формирования как минимум трех парафиновых срезов трепанобиоптатов, полученные срезы обрабатывают следующим образом: первый импрегнируют серебром по методу Гомори, второй окрашивают по методу ван Гизона и третий окрашивают гематоксилином и эозином, полученные таким образом обзорные изображения подвергают фиксации и анализу так, что в результате этого анализа получают величину площади зон, окрашенных в черный и розовый цвета, соответствующих фиброзной ткани, и величину площади зон, окрашенных в синий и бледно-розовый цвета, соответствующих гемопоэтической ткани; затем вычисляют коэффициент относительной площади как отношение площади фиброзной ткани к площади гемопоэтической ткани по формуле:

где:
Коп - коэффициент относительной площади (в процентах);
Sчepн - площадь зоны ткани, окрашенной в черный цвет;
Sроз - площадь зоны ткани, окрашенной в розовый цвет;
Sбл-роз - площадь зоны ткани, окрашенной в бледно-розовый цвет;
Sсин - площадь зоны ткани, окрашенной в синий цвет,
причем при значении Коп≥14,5% диагностируют миелофиброз.

2. Способ автоматизированной морфометрической диагностики миелофиброза по п. 1, отличающийся тем, что парафиновые срезы трепанобиоптатов формируют толщиной 4 мкм.

3. Способ автоматизированной морфометрической диагностики миелофиброза по п. 1, отличающийся тем, что фиксация обзорных изображений парафиновых срезов осуществляется с помощью цветной фотовидеокамеры.

4. Способ автоматизированной морфометрической диагностики миелофиброза по п. 1, отличающийся тем, что величину площади зон, окрашенных в черный и розовый цвета, соответствующих фиброзной ткани, и величину площади зон, окрашенных в синий и бледно-розовый цвета, соответствующих гемопоэтической ткани, получают с помощью источника света и соответствующих RGB датчиков определения цвета, так что площадь окрашенных зон соответствует электрическому напряжению на выходе цветовых датчиков.

5. Способ автоматизированной морфометрической диагностики миелофиброза по п. 4, отличающийся тем, что площадь окрашенных зон получают с помощью установленного в цепи после RGB датчиков цифрового сигнального процессора.

6. Способ автоматизированной морфометрической диагностики миелофиброза по п. 4, отличающийся тем, что анализ для получения величин площадей окрашенных зон производят с помощью компьютеризированного микроскопа.

7. Способ автоматизированной морфометрической диагностики миелофиброза по п. 4, отличающийся тем, что в качестве источника света используют RGB светодиодный источник света.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к медицине и может быть использовано для оценки эффективности коррекции сперматогенеза у животных в условиях воздействия микроволнового излучения.
Изобретение относится к области медицины, в частности гепатологии. Способ количественной оценки гистологической активности в биоптатах печени при хронических диффузных заболеваниях печени приводит к протоколу подсчета в абсолютных числах, процентах и баллах патологических признаков, выявленных при морфологическом изучении биоптатов печени больных хроническими диффузными заболеваниями печени, по разделам: некроз гепатоцитов, крупнокапельная и мелкокапельная жировая, гидропическая дистрофия гепатоцитов, мелкоклеточная дисплазия гепатоцитов, портальная, перипортальная, внутридольковая и центральная инфильтрация.
Изобретение относится к области ветеринарии и предназначено для неинвазивной экспресс-диагностики воспалительного процесса в кишечнике у телят. Способ включает определение в кале лейкоцитов, белка, гемоглобина и pH-реакции кала.
Изобретение относится к медицине и предназначено для лечения больных с перфорацией язвы желудка и двенадцатиперстной кишки. Выполняют лапаротомию, производят оперативное пособие по поводу перфорации язвы, во время операции берут экссудат из брюшной полости, определяют pH экссудата.

Изобретение относится к медицине и касается диагностики урогенитального трихомониаза на основе цитоморфотипа возбудителя. Способ включает комплексное клинико-лабораторное и микробиологическое исследование отделяемого урогенитального тракта пациентов с определением цитоморфотипа возбудителя при культуральном методе исследования и оценки степени выраженности воспаления или лейкоцитоза в урогенитальном тракте обследуемых.

Изобретение относится к области медицины, а именно к способу получения клеток и неклеточных элементов атеросклеротической бляшки. Сущность способа состоит в том, что после выполнения баллонной ангиопластики с поверхности баллонного катетера производят смыв клеток и неклеточных элементов, затем полученную суспензию клеток и неклеточных элементов подвергают центрифугированию, удаляют надосадочную жидкость, осуществляют ресуспензирование клеток и неклеточных элементов, затем суспензии клеток и неклеточных элементов помещают в заряженные цитобакеты, которые центрифугируют, после чего полученные препараты используют для дальнейших исследований.
Изобретение относится к практической медицине, в частности к клинико-лабораторной диагностике и экспериментальной медицине. Изобретение представляет способ прогнозирования тромбоэмболических осложнений при хирургическом лечении больных с онкологическими заболеваниями легких, характеризующийся тем, что при осуществлении хирургического вмешательства на легких до лигирования сосудов поврежденного легкого выполняют доступ к его приводящему и отводящему сосудам с последующим забором пробы крови из каждого сосуда и проводят взятие пробы венозной крови из периферической вены, после хирургического вмешательства определяют количественное значение содержания свободного гепарина в каждой пробе, после чего рассчитывают показатель К, равный среднеарифметическому значению содержания свободного гепарина в приводящем сосуде поврежденного легкого и венозной крови из периферической вены, затем сравнивают рассчитанный показатель К с количественным значением содержания свободного гепарина в отводящем сосуде легкого Р и при К<Р на 25% и менее прогнозируют высокий риск возникновения тромбоэмболических осложнений в послеоперационный период, при К<Р на более чем 25% прогнозируют низкий риск возникновения тромбоэмболических осложнений в послеоперационный период.

Изобретение относится к области медицины и представляет собой способ дифференциальной диагностики хронического вирусного гепатита и жирового поражения печени у больных с синдромом дислипидемии, заключающийся в том, что у больного в сыворотке крови определяют активность фермента антиоксидантной системы глутатионредуктазы (ГЛР), которую оценивают спектрофотометрическим методом, и при значении ГЛР менее или равно 14,6 мкмоль/л/мин диагностируют жировую болезнь печени, при концентрации ГЛР более 14,6 мкмоль/л/мин - хронический вирусный гепатит.

Изобретение относится к медицине, а именно к лабораторной диагностике, и предназначено для определения тяжести течения бронхиальной астмы. Сущность способа заключается в исследовании сыворотки крови методом краевой дегидратации в поляризованном свете.

Изобретение относится к медицине и предназначено для лечения рака желудка. Предварительно определяют уровни онкомаркеров СЕА, СА 19-9, СА 72-4, М2-ПК, индекс пролиферации Ki-67, выполняют совмещенную позитронно-эмиссионную и компьютерную томографию (ПЭТ/КТ).
Изобретение относится к медицине, а именно к акушерству. Изобретение представляет способ прогнозирования преэклампсии во втором триместре беременности путем исследования крови, отличающийся тем, что в сыворотке крови женщин в 7-8 недель беременности определяют активность кислых и нейтральных протеиназ и при значении активности кислых протеиназ выше 5,6 мкмоль/л и активности нейтральных протеиназ выше 3,9 мкмоль/л прогнозируют развитие преэклампсии во втором триместре беременности. Изобретение обеспечивает повышение точности и специфичности способа прогнозирования гестоза. 2 пр.

Группа изобретений относится к медицине, косметологии, производству продуктов питания, витаминов, БАДов, лекарственных средств и описывает варианты устройства для реализации неинвазивного потенциометрического определения оксидантной/антиоксидантной активности биологических тканей, включающего прибор для измерения потенциалов и двухсторонний электрод, выполненный в виде пластины с одинаковыми рабочими поверхностями, покрытыми электропроводящим гелем, содержащим медиаторную систему. Электроды закрепляют на биологической ткани таким образом, что одна рабочая поверхность, выполняющая роль измерительного электрода, находится в непосредственном контакте с биологической тканью через гель, вторая рабочая поверхность выполняет роль электрода сравнения. При этом электроды через гель контактируют друг с другом, а оксидантную/антиоксидантную активность определяют по формулам, используя разность конечного и начального потенциалов. Достигается упрощение, а также повышение точности и достоверности определения. 2 н. и 12 з.п. ф-лы, 3 табл., 4 ил.
Изобретение относится к области медицины и касается способа диагностики обострения цитомегаловирусной инфекции в третьем триместре гестации. Способ включает определение в крови беременных титра антител к цитомегаловирусу и активности глутатионредуктазы в эритроцитах рожениц с цитомегаловирусной инфекцией. При значении титра антител к цитомегаловирусу 1:1600 и значении активности глутатионредуктазы ниже 4,48±0,22 Ед/гНb диагностируют обострение цитомегаловирусной инфекции.

Изобретение относится к области медицины и предназначено для выявления атипичных форм трихомонад. Способ включает взятие биологического ткани, введение в нее биологически активного вещества, выдержку полученной смеси в термостате при 37°C с последующей инкубацией, проведение микроскопического исследования для выявления форм трихомонад. В качестве биологической ткани осуществляют забор материала со слизистых оболочек мочеполовых органов, который инкубируют в течение суток в питательной среде. Отделяют полученный осадок и добавляют к нему в качестве биологически активного вещества нитрозогуанидин в количестве 500 мкг/мл. Инкубируют 15 мин при температуре +37°C, добавляют подогретый до температуры +37°C фосфатный буфер с pH 5,6 с последующим двойным центрифугированием при 1000 об/мин в течение 10 мин. Затем помещают в питательную среду для выращивания трихомонад, инкубируют не менее суток и при микроскопии выявляют атипичные безжгутиковые и типичные округлые и амебовидные формы трихомонад. Использование заявленного изобретения позволяет эффективно, быстро и достоверно выявлять типичные измененные и атипичные формы трихомонад. 3 ил., 3 пр.

Изобретение относится к области медицины, а именно к гинекологии, и предназначено для диагностирования нарушения репродуктивной функции у пациенток с миомой матки. Способ заключается в определении количества пиноподий в поверхностном эпителии, уровня экспрессии рецепторов прогестерона и эстрогена-альфа в строме эндометрия, их соотношения, а также уровня экспрессии имплантационного фактора LIF на 21-24 день менструального цикла (в «окно имплантации»). При количестве пиноподий менее 35%, уровне соотношения экспрессии прогестероновых и эстрогеновых рецепторов в строме эндометрия менее 3,5, а также уровне экспрессии LIF менее 2 баллов диагностируют нарушение фертильности, связанное с миомой матки. Данный метод позволяет применять дифференцированный подход к ведению пациенток, планирующих беременность, с миомой матки, не деформирующей полость матки, а также с размерами миоматозных узлов до 5,0 см в диаметре. 2 пр., 4 ил.
Изобретение относится к медицине, а именно к кардиологии и аритмологии, и может быть использовано для прогнозирования развития нарушений ритма сердца у пациентов с синдромами преждевременного возбуждения желудочков. Для этого в плазме крови больного определяют концентрацию матриксной металлопротеиназы-9 (ММП-9) и при ее значении менее 90,6 нг/мл прогнозируют благоприятное течение заболевания без развития нарушений ритма сердца (НРС), при значении концентрации ММП-9 более 90,6 нг/мл прогнозируют развитие НРС. Способ позволяет прогнозировать развитие НРС у пациентов с синдромами преждевременного возбуждения желудочков за счет высокой чувствительности и специфичности метода при малой инвазивности способа и отсутствии противопоказаний. 3 пр.

Изобретение относится к медицине, в частности к онкологии, и может быть использовано для выявления симптомов эндогенной интоксикации (ЭИ) пациентов, страдающих колоктеральным раком. Для этого исследуют клинический анализ крови и расчитывают интегральный показатель интоксикации (ИПИ) по формуле: И П И = ( Ю н + П а л + С е г + М и е л + П л а з ) * 10 ( Б а з + Э о з + Л и м + М о н ) * Э р * Ц п где ИПИ - интегральный показатель интоксикации, Юн - юные лейкоциты в %, Пал - палочкоядерные нейтрофилы в %, Сег - сегментоядерные нейтрофилы в %, Миел - миелоциты в %, Плаз - плазматические клетки в %, Баз - базофилы в %, Эоз - эозинофилы в %, Лим - лимфоциты в %, Мон - моноциты в %, Эр - эритроциты в абсолютном значении в 1012 степени, ЦП - цветовой показатель в абсолютном значении. Изобретение обеспечивает диагностику отсутствия (при ИПИ=4,6) или наличия (при ИПИ=10,4) симптомов ЭИ и ассоциированных с нею дыхательных расстройств и позволяет оценить эффективность проводимой терапии.

Изобретение относится к области медицины. Предложен способ, включающий определение наличия или отсутствия мутации K-rasG12D. Наличие мутации K-rasG12D указывает на то, что пациент не ответит на лечение ингибитором В-Raf. Изобретение обеспечивает эффективный способ идентификации пациента, не отвечающего на лечение ингибитором B-Raf. 5 з.п. ф-лы, 34 ил., 12 табл., 3 пр.

Изобретение относится к медицине, а именно к биохимии. Способ позволяет прогнозировать вероятность развития гестоза беременных. Задачей представленного изобретения является комплексная оценка белковых факторов риска с учетом клинической картины и значимости каждого фактора в числовом эквиваленте. Поставленная задача в изобретении решается тем, что для прогнозирования гестоза беременных предлагается определять уровни плацентарной щелочной фосфатазы и лактоферрина в суточной моче беременных на 20-22 неделе беременности и повторно через 2 недели и по суммам концентраций плацентарной щелочной фосфатазы и концентраций лактоферрина выше 16,0 нг/мл судить о возможности развития гестоза. 1 табл.
Изобретение относится к медицине, а именно к способу дифференциальной диагностики генерализованной формы внутриутробной моно- и микст-цитомегаловирусной инфекции у новорожденных. Сущность способа состоит в том, что у новорожденных с генерализованной формой внутриутробной моно-цитомегаловирусной инфекции или микст-цитомегаловирусной инфекции в надосадочной части биологической жидкости носоглоточного аспирата определяют концентрацию серомукоида. При концентрации серомукоида 0,110-0,140 единиц оптической плотности диагностируют раннюю стадию развития генерализованной формы внутриутробной моно-цитомегаловирусной инфекции. При концентрации серомукоида 0,141-0,171 единиц оптической плотности диагностируют раннюю стадию генерализованной формы внутриутробной микст-цитомегаловирусной инфекции, обусловленной сочетанием вируса цитомегалии и простого герпеса 1 типа. Использование заявленного способа позволяет эффективно осуществить дифференциальную диагностику генерализованной формы внутриутробной моно- и микст-цитомегаловирусной инфекции у новорожденных. 1 табл., 3 пр.
Наверх