Способ иммунологического определения антигенов анизакид в мышечной ткани рыб



Способ иммунологического определения антигенов анизакид в мышечной ткани рыб
Способ иммунологического определения антигенов анизакид в мышечной ткани рыб

 


Владельцы патента RU 2613296:

Федеральное государственное бюджетное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт фундаментальной и прикладной паразитологии животных и растений им. К.И. Скрябина (ФГБНУ "ВНИИП им. К.И. Скрябина") (RU)

Изобретение относится к области ветеринарной и медицинской гельминтологии, в частности к иммунологическому методу обнаружения антигена личинок анизакид в мышечной ткани рыбы, и может быть рекомендовано для ветеринарно-санитарной экспертизы морепродуктов. Способ предусматривает приготовление белково-антигенного экстракта из личинок третьей стадии Anisakis simplex, контроль его на стерильность, определение содержания белка, получение гипериммунной сыворотки к белково-антигенному экстракту из личинок 3-й стадии A.simplex иммунизацией кроликов в комплексе с полным адъювантом Фрейнда; проведение реакции иммунодиффузии (РИД) в агаровом геле с полученной гипериммунной сывороткой и жидкостью, образующейся при разморозке морепродуктов. Проявление полосы преципитации между этой жидкостью и гипериммунной сывороткой к белково-антигенному экстракту A.simplex свидетельствует о присутствии в морепродуктах антигенов личинок. Способ эффективен в выявлении антигенов анизакид в жидкости, полученной при размораживании мышечной ткани рыб. 2 ил., 2 пр.

 

Изобретение относится к области ветеринарной и медицинской гельминтологии, в частности к иммунологическому методу обнаружения антигена личинок анизакид в мышечной ткани рыбы, и может быть рекомендовано для ветеринарно-санитарной экспертизы морепродуктов.

Анизакидоз, вызванный личинками нематод семейства Anisakidae Skrjabin et Koroktin 1945, является опасным для здоровья человека и животных заболеванием [2, 4-6].

Человек и домашние плотоядные заражаются при употреблении в пищу морских рыб и морепродуктов, в которых содержатся жизнеспособные личинки паразита. В последние два десятилетия анизакидозная инвазия становится одной из важных проблем в медицинской паразитологии. Заболеваемость людей имеет стойкую тенденцию к росту в связи с увеличением потребления в пищу блюд из сырой или полусырой рыбы, ракообразных, кальмаров и других моллюсков. Личинки анизакид при попадании в желудочно-кишечный тракт человека или животных активно внедряются в слизистую и подслизистую оболочки, часто обнаруживаются в стенках желудка и тонкого кишечника. На месте их внедрения развивается воспаление, сопровождающееся эозинофильной инфильтрацией, отеком, изъязвлением и геморрагиями. В дальнейшем возможно формирование эозинофильных гранулем, некроза и перфорации кишечной стенки [16, 18].

Анизакидоз у морских млекопитающих проявляется образованием язв на стенках желудка, иногда им сопутствует гастрит. Экспериментальное заражение морских свинок личинками A. simplex сопровождалось образованием в желудке кратерообразных язв [20]. Личинки анизакид способны инвазировать свиней при скармливании им пораженных ими рыбных отходов [2].

Описаны случаи локализации личинок анизакид в глотке, поджелудочной железе, селезенке и лимфатических узлах [7, 14].

Возбудители анизакидоза человека - преимущественно личиночные стадии гельминтов рода Anisakis. В замороженной рыбе и других гидробионтах допускается наличие только нежизнеспособных личинок гельминтов [8]. Однако необходимо помнить, что соматические белки гельминтов и продукты их метаболизма могут оказывать токсическое и аллергенное действие.

Установлено, что в мышечной ткани морской рыбы с увеличением степени инвазии происходит снижение связанных аминокислот: тирозина, фенилаланина, лейцина, метионина, серина, а-аланина. В то же время происходит концентрация свободных аминокислот (в 4-9 раз), что свидетельствует о процессах распада белка, сопровождающегося выделением аммония. Помимо этого в мышечной ткани происходят процессы окисления с образованием альдегидов, эфиров, кетонов, карбоновых кислот, в частности масляной кислоты, а также накопление метанола [9]. Авторами доказано, что путассу, сельдь и хамса при интенсивности инвазии (ИИ) выше 20 экземпляров, минтай, мойва - более 7 экземпляров отличаются более низкими показателями качества и питательной ценности. В связи с тем, что в мышечной ткани рыбы могут присутствовать вызывающие патологические процессы антигенные компоненты личинок анизакид, возникает необходимость разработки методов их выявления в рыбопродуктах. Проблемой иммунологической диагностики анизакидоза у человека занималось большое число исследователей. В качестве диагностических методов использовали внутрикожную пробу [10, 17], реакцию связывания комплемента [17], иммунодиффузию [13, 15], иммунофлуоресценцию [17, 19, 23], иммуноэлетрофорез [12, 13], иммуноферментный анализ [19] и радио-аллергосорбентную реакцию [11, 12, 19].

Все перечисленные иммуноалергические реакции предназначались для диагностики зараженности анизакидами человека и основывались они в основном на обнаружении антител в сыворотке крови людей с подозрением на анизакидоз. Имеются также экспериментальные доказательства, что антигены и аллергены анизакид диффундируют в мышечную ткань рыб и могут вызывать аллергические реакции у сенсибилизированных пациентов [21].

Наиболее близким к заявляемому техническому решению является метод иммунодиффузии, использованный в качестве диагностического Kobayashi A. et al [13] и Mudry J. et al [15], который, как и в нашей разработке, проводится в агаровом геле, но с использованием сыворотки крови пациентов с подозрением на заболеваемость антизакидозом и антигена из анизакид. В этом случае исход реакции зависит от уровня специфических антител в кровотоке инвазированного пациента. Как правило, при низкой интенсивности инвазии уровень антител невысокий и реакция отрицательная. Метод в таком варианте постановки реакции с указанными реагентами не позволяет определить зараженность рыбной продукции анизакидами.

Сопоставительный анализ показывает, что заявляемое техническое решение отличается от прототипа тем, что оно позволяет в таком варианте используемых реагентов реакции определить зараженность рыбной продукции анизакидами и продуктами их жизнедеятельности, поэтому данное техническое решение отвечает критерию «новизна».

Цель изобретения сводится к выявлению антигенов анизакид в жидкости, полученной при размораживании мышечной ткани рыб, с помощью гипериммунной сыворотки кроликов к белково-антигенному экстракту личинок 3-й стадии A. simplex.

Предлагаемый способ включает следующие этапы:

1. Получение белково-антигенного экстракта из личинок 3-й стадии A. simplex, контроль его на стерильность и определение содержания белка.

2. Получение гипериммунной сыворотки к белково-антигенному экстракту из личинок 3-й стадии A.simplex.

3. Проведение реакции иммунодиффузии в агаровом геле.

Примеры конкретного исполнения

Получение белково-антигенного экстракта из личинок 3-й стадии A.simplex, контроль его на стерильность и определение содержания белка

Извлеченных из тушек рыбы личинок A.simplex 3-й стадии тщательно многократно промывали проточной водой, затем обрабатывали растворами антибиотиков и противогрибкового препарата из расчета 2000 ЕД/мл пенициллина, 1 мг/мл стрептомицина и 2500 ЕД/мл нистатина, промывали стерильным физиологическим раствором и замораживали. Белково-антигенный экстракт из личинок A. simplex готовили путем гомогенизации, многократного замораживания и оттаивания до получения однородной массы. Экстрагирование белков проводили в стерильном забуференном физиологическом растворе рН 7,2-7,4 в соотношении 1:10 при температуре +4°С в течение 18 часов. Белково-антигенный экстракт получали центрифугированием при 12 тыс. об/мин в течение 15-20 минут, хранили в замороженном состоянии при температуре -10°С и использовали для иммунизации животных.

Контроль на стерильность. Для обнаружения контаминации бактериями, грибами и микоплазмами пробу белково-антигенного экстракта из личинок анизакид высевали на МПА, МПБ и МППБ по одной пробирке, для выявления грибковой контаминации на агар Сабуро в две чашки Петри. На микоплазменную контаминацию пробу высевали на универсальной плотной среде для выделения микоплазм (ООО «Научно-производственная фирма Диагност-Мед») согласно инструкции в две чашки Петри.

Контроль вели в течение трех пассажей на этой же среде. Посевы на МПА, МПБ и МППБ выдерживали в течение 10 суток при +37°С, посевы на полужидком агаре - 14 дней при +37°С и на среде Сабуро - 15 дней при +23°С. При обнаружении хотя бы одного из контаминантов партию белково-антигенного экстракта считали нестерильной и в дальнейшем работе не использовали.

Определение содержания белка

Концентрацию белка в полученном белково-антигенном экстракте определяли на биохимическом полуавтоматическом анализаторе StatFax 1904+ (AWARENESS technology inc) с использованием набора реактивов Spinreact S.A. согласно инструкции при длине волны 540 нм. В качестве контроля использовали фосфатно-солевой буферный раствор.

Получение гипериммунной сыворотки к белково-антигенному экстракту из личинок 3-й стадии A.simplex.

Гипериммунную сыворотку получали иммунизацией кроликов белково-антигенным экстрактом из личинок 3-й стадии A.simplex. Кроликам породы серый великан живой массы 3 кг внутримышечно вводили возрастающие дозы указанного экстракта в комплексе с полным адъювантом Фрейнда (Диаэм, США) по методике Бережко В.К. и др. (1), по схеме три цикла трехдневной иммунизации с трехдневными перерывами. Затем через 28 дней проводили реиммунизацию для повышения активности гипериммуных сывороток. Общая доза введенного экстракта по белку составила 10,0 мг/животное. Кровь для приготовления сыворотки получали на 7-9-й день после реиммунизации и хранили при -10°С.

Проведение реакции иммунодиффузии в агаровом геле.

Перед проведением основного эксперимента проверяли активность полученных гипериммунных сывороток в реакции иммунодиффузии (РИД) в 1,2%-ном агаровом геле (Difco) на физиологическом растворе (3) в штампе «семерка» (Приложение), где в центральную лунку (ЦЛ) вносили белково-антигенный экстракт из личинок 3-й стадии A.simplex, в периферийные (лунки 1-6) гипериммунные сыворотки, полученные от иммунизированных кроликов. В результате, во всех случаях мы получили четкие полосы преципитации, свидетельствующие о достаточной активности полученных нами гипериммунных сывороток (рис. 1).

Пример 1. Для обнаружения антигена личинок анизакид в мышечной ткани рыб провели РИД в варианте «четверка» с использованием жидкости, полученной при размораживании мышечной ткани инвазированной анизакидами путассу (лунка 1) и гипериммунную сыворотку к белково-антигенному экстракту личинок 3-й стадии A.simplex (лунка ЦЛ). В результате между этими компонентами реакции проявилась четкая полоса преципитации (рис. 2). Полученный положительный результат подтверждает возможность попадания соматических и эксреторно-секреторных продуктов гельминтов в мышечную ткань рыбной продукции, что может вызвать патологические изменения желудочно-кишечного тракта при продолжительном употреблении такой продукции. В лунке 3 (рис. 2) находится жидкость незараженной анизакидами рыбной продукции, реакция между реагентами отрицательная.

Пример 2. Аналогичную реакцию провели с жидкостью, полученной при размораживании мышечной ткани инвазированного анизакидами минтая, (лунка 2) и той же гипериммунной кроличьей сывороткой (лунка ЦЛ) (рис. 2) В результате проявившаяся полоса преципитации между этими реагентами также показала идентичность с таковой, проявленной между гипериммунной кроличьей сывороткой и жидкостью, полученной от зараженной анизакидами путассу (лунка 1). Эти примеры являются убедительным доказательством возможности использования РИД с гипериммунной сывороткой к белково-антигенному экстракту личинок 3-й стадии A. simplex и жидкости, получаемой при размораживании рыбной продукции, для ветеринарно-санитарной экспертизы морепродуктов на пораженность анизакидами.

Источники информации

1. Бережко В.К. Иммунохимический анализ соматического экстракта из половозрелых Dirofilaria immitis / В.К. Бережко, К.А. Хайдаров, И.С. Дахно, Е.П. Шкурка // Матер. докл. научн. конф. «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». - 2008. - вып. 9. - С. 69-73.

2. Горохов В.В., Сергиев В.П., Романенко Н.А. // Мед. паразитол. - 1998. - №4. - С. 50-54.

3. Гусев А.И. К технике постановки реакции микропреципитации в агаре. / А.И. Гусев, В.С. Цветков // Лаб. Дело. - 1961. - №2. - С. 43-45.

4. Добряков Е.Ю. Анизакидоз у людей в Приморском крае / Е.Ю. Добряков, А.В. Ермоленко // Мед. паразитол. и паразит. болезни. – 2008. - №4. - С. 11-14.

5. Довгалев А.С., Сергиев В.П., Коваленко И.М. и др. // Рыб. хоз-во. Сер.: Аквакультура: Информпакет. Рыбы как переносчики болезней человека и животных. - 1999. - Вып. 1. - С. 14-33.

6. Карманова И.В. О зараженности лососевых рыб водоемов Камчатки нематодами рода Anisakis / И.В. Карманова, Г.П. Линова // Мед. паразитол. и паразит, болезни - 2002. - №3. - С. 19-21.

7. Козлов С.С., Лобзин Ю.В. Руководство и атлас по паразитарным болезням человека (Multimedia resources on CD-ROM): (170 MБ). - Москва. - 2005.

8. Поздняковский B.M., Рязанова О.А., Каленик Т.К., Дацун В.М. Экспертиза рыбы, рыбопродуктов и нерыбных объектов водного промысла. Качество и безопасность. - Сибирское университетское издательство. - Новосибирск. - 2005. - 309 с.

9. Сапунов А.Я. Влияние свободных и связанных аминокислот, летучих органических компонентов на качество и безопасность рыбы разных видов при анизакидозе / А.Я. Сапунов, М.Е. Дубинина, Н.Н. Гугушвили, Т.А. Инюкина, О.Б. Петрик, К.В. Синецкий // Матер.докл. научн. конф. «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями», выпуск 11. - М. - 2010. - С. 401-405.

10. Asaishi К. Studies on the etiologic mechanism of anisakiasis / K. Asaishi, C. Nishino, M. Totsuka, H. Hayasaka, T. Suzuki // Gastroenterol. Jpn. - 1980. - Vol/15. - P. 128-134.

11. Deardorff T.L. Invasive anisakiasis. A case report from Hawaii / T.L. Deardorff, T. Fukumura, R.B. Raybourne // Gastroenterology. - 1986. - Vol. 90. - P. 1047-1050.

12. Desowitz R.S. The allergosorbent test (RAST) for the serological diagnosis of human anisakiasis. / R.S. Desowitz, R.B. Raybourne, H. Ishikura, M. Kliks // Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. - 1985. - Vol. 79. - P. 256-259.

13. Kobayashi A. Probable pulmonary anisakiasis accompanying pleural effution / A. Kobayashi, M. Tsuji, D.L. Wilbur // Am. J. Trop. Med. Hyg. - 1985. - Vol. 34. - P. 310-313.

14. Castan B. Degestiv anisakiasis: clinical manifestations and diagnosis according to localization / B. Castan, F. Borda et al // Rev. Esp / Enferm Dig 2002 Aug: 94 (8). - 463-472.

15. Mudry J. Anisakiasis humaine: 5 cas dans le nord de la France. / J. Mudry, P. Lefebvre, E. Dei-Cas, A. Vernes, J. Poirriez, M. Debat, R. Marti, P. Binot, A. Cortot // Gastroenterol. Clin. Biol. - 1986. - Vol. 10. - P. 83-87.

16. Nawa Y. Sushi delights and parasites: the risk of fishborne and footborne parasitic zoonoses in Asia./ Y. Nawa, C.Hatz, J. Blum // Clin Infect. Dis. - 2005. - V. 41, №9. - P 1297-1303.

17. Oshima T. Anisakis and anisakiasis in japan and adjacent areas. / T. Oshima // Prog. Med. Parasitol. Jpn. - 1972. - Vol. 4. -P. 305-393.

18. Roland Samantha К. Is it safe to eat sushi? Bowel obstruction related to anisakiasis. / Samanta K. Roland, William B. Keeling, Sivaselvi Gunasekaran, David H. Shapiro // Clinicalobservations. - 2008.

19. Sakanari J.A. Intestinal anisakiasis. A case diagnosed by morphologic and immunologic methods. / J.A. Sakanari, H.M. Loinaz, T.L. Deardorff, R.B. Raybourne, J.H. McKerrow, J.G. Frierson // Am. J. Clin. Pathol. - 1988. - Vol. 90. - P. 107-113.

20. Smith J.W. Ulcers associated with larval Anisakis simplex В Nematoda: (Ascaridoidea) in the for stomach of harbor porpoises phocoena phocoena (L) // Can J. Zool. - 1989. - v. 67, №9. - p. 2270-2276.

21. Solas М.Т. / Anisakis antigens detected in fish muscle infested with Anisakis simplex L3. |/ Solas M.T, Garcia M.L., Rodriguez-Mahillo A.I., Gonzalez-Munoz., De Las Heras C., Tejada M. // Journal of Food Protection. - 2008. - Vol. 71. - №6. - P. 1273.

22. Sugimachi K. Acute gastric anisakiasis / K. Sugimachi, K. Inokuchi, T. Ooiwa, T. Fujino, Y. Ishii // J. Am. Med. Assoc. - 1985. - Vol. 253. - P. 1012-1013.

23. Suzuki T. Anisakiasis: preparation of a steble antigen for indirect fluorescent antibody test./ T. Suzuki, Y. Sato, T. Yamashita, M. Otsuru // Exp. Parasitol. - 1974. - Vol. 35. - P. 418-424.

Способ иммунологического определения антигенов анизакид в мышечной ткани рыб, включающий проведение реакции иммунодиффузии в агаровом геле, отличающийся тем, что реакцию, проявляющуюся в виде полосы преципитации, проводят между гипериммунной сывороткой к белково-антигенному экстракту из личинок 3-й стадии Anisakis simples и жидкостью, образующейся при разморозке мышечной ткани рыб.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к области иммунодиагностики и может быть использовано для иммунодиагностического тестирования биологического образца. Карта иммунодиагностического тестирования включает плоскую подложку и множество содержащихся на ней прозрачных колонок с инертным тестовым материалом, выполненным с возможностью формирования реакции агглютинации при добавлении биологического образца и реагента.

Изобретение относится к медицине, а именно к профессиональной патологии и пульмонологии, и может быть использовано для диагностики профессиональной хронической обструктивной болезни легких, сформировавшейся в условиях действия токсических промаэрозолей.

Изобретение относится к области молекулярной онкологии и может быть использовано для дифференциальной диагностики рака желудка различных гистологических типов. Способ включает получение ДНК, выделенной из биопсийного материала; амплификацию фрагментов локусов GSTP1, NFKB1 и HV2 методом полимеразной цепной реакции в реальном времени (ПЦР-РВ) с помощью набора высокоспецифичных праймеров; количественную интерпретацию результатов амплификации.

Изобретение относится к медицине, а именно к педиатрии, и может быть использовано для оценки дисфункции иммунитета у детей дошкольного возраста с рецидивирующей респираторной инфекцией, проживающих на территориях вокруг химически опасных производств.

Изобретение относится к медицине, а именно к онкогинекологии, и может быть использовано для прогноза возникновения рецидива у больных раком вульвы. Для этого в ткани больных раком вульвы иммуногистохимическим методом оценивают экспрессию лимфоцитарных маркеров CD4+ и CD8+, рассчитывают коэффициент отношения CD4+/CD8+.

Изобретение относится к медицине, а именно к офтальмологии, и может быть использовано для прогноза развития увеита у пациентов с ювенильным идиопатическим артритом (ЮИА).

Изобретение относится к биотехнологии, а именно к электрохимическому иммуноанализу. Предложен способ определения содержания грамотрицательных бактерий в анализируемой среде.

Изобретение относится к медицине, а именно гастроэнтерологии, и может быть использовано для определения генерализации злокачественного процесса после оперативного лечения рака головки поджелудочной железы.

Изобретение относится к медицине, а именно к диагностике, и может быть использовано для оценки угрозы формирования фетоплацентарной недостаточности при оценке индуцирующего действия обострения цитомегаловирусной инфекции на содержание 7-дегидроксихолестерина на третьем триместре гестации.

Изобретение относится к медицине и касается способа дифференциальной диагностики начальных проявлений нейроинтоксикации винилхлоридом и парами металлической ртути, включающего проведение неврологического осмотра, где дополнительно определяют в сыворотке крови уровни антител к ацетилхолиновым рецепторам и антител к серотонинэргическим рецепторам, рассчитывают диагностические коэффициенты F1 и F2 по формулам.
Изобретение относится к медицине, а именно к аллергологии и дерматологии, и может быть использовано для прогнозирования инфекционного осложнения атопического дерматита у детей при специфической иммунотерапии. Для этого перед началом проведения специфической иммунотерапии (АСИТ) проводят определение фагоцитарной активности гранулярных нейтрофилов по фагоцитарному показателю (ФП) и фагоцитарному числу (ФЧ) в крови ребенка. При ФП ниже 45,5±1,02% и ФЧ ниже 2,14±0,4 микробных прогнозируют развитие инфекционного осложнения атопического дерматита вирусной, бактериальной или грибковой этиологии. Использование данного способа позволяет уменьшить частоту инфекционных осложнений атопического дерматита при АСИТ у детей, повышая эффективность дечения тяжелых и стойких форм заболевания. 3 пр.

Изобретение относится к медицине и может быть использовано для определения присутствия белка STEAP-1 в биологическом образце, полученном от индивида, имеющего подозрение на метастатический рак предстательной железы. Для этого биологический образец подвергают воздействию меченного 89цирконием антитела против STEAP-1 и измеряют связывание меченного 89цирконием антитела против STEAP-1 с белком в биологическом образце. При этом связывание меченного 89цирконием антитела против STEAP-1 с белком является показателем присутствия белка STEAP-1 в образце. Меченное 89цирконием антитело против STEAP-1 содержит вариабельную область тяжелой цепи, содержащую гипервариабельную область CDR-H1, содержащую GYSITSDYAWN, CDR-H2, содержащую GYISNSGSTSYNPSLKS, и CDR-H3, содержащую ERNYDYDDYYYAMDY; и вариабельную область легкой цепи, содержащую CDR-L1, содержащую KSSQSLLYRSNQKNYLA, CDR-L2, содержащую WASTRES, и CDR-L3, содержащую QQYYNYPRT, и меченное 89цирконием антитело против STEAP-1 представляет собой 89цирконий-десферриоксамид (Df) антитело против STEAP-1. Изобретение позволяет определять присутствия белка STEAP-1 в биологическом образце, полученном от индивида, с метастатическим раком предстательной железы. 5 з.п. ф-лы, 2 табл., 30 ил., 10 пр.
Изобретение относится к медицине, а именно к диагностике, и может быть использовано для прогнозирования синдрома задержки роста плода в третьем триместре гестации при обострении хронического простого бронхита, обусловленного гриппом A(H3N2), у женщин во втором триместре беременности. Для этого определяют уровень антител к вирусу гриппа в сыворотке крови, полученной на 21-24 день заболевания, и оценивают его изменение по сравнению с сывороткой крови, полученной на 12-14 день заболевания, в баллах: 1 балл - нет роста титра антител; 2 балла - рост титра антител в 2 раза; 3 балла - рост титра антител в 4 раза; 4 балла - рост титра антител более чем в 4 раза) (А), оценивают содержание среднемолекулярных пептидов в плазме крови на 21-24 день заболевания (ед. оп. пл.) (В), определяют концентрацию фактора некроза опухоли - а на 21-24 день заболевания в сыворотке крови (пг/мл) (С), а затем с помощью дискриминантного уравнения рассчитывают величину дискриминантной функции: D=-2,790×А-149,616×В-0,121×С; и при D равной или больше -50,23 прогнозируют отсутствие синдрома задержки роста плода, а при D меньше -50,23 прогнозируют развитие синдрома задержки роста плода. Способ позволяет обоснованно и своевременно проводить лечебные мероприятия, направленные на профилактику синдрома задержки роста плода, при простоте его исполнения. 2 пр.
Изобретение относится к медицине, а именно к диагностике, и может быть использовано для прогнозирования внутриутробного инфицирования плода у женщин во втором триместре гестации при обострении хронического простого бронхита, обусловленного гриппом A(H3N2). Для этого определяют титр антител к вирусу гриппа A(H3N2) в сыворотке крови, полученной на 21-24 дни заболевания, и оценивают его изменение по сравнению с сывороткой крови, полученной на 12-14 день заболевания, в баллах: 1 балл - нет роста титра антител; 2 балла - рост титра антител в 2 раза; 3 балла - рост титра антител в 4 раза; 4 балла - рост титра антител более, чем в 4 раза (А), оценивают концентрацию интерферона-γ (пг/мл) (В), устанавливают содержание циркулирующих иммунных комплексов (ЦИК) (ед. оп. пл.) (С), а затем с помощью дискриминантного уравнения рассчитывают величину дискриминантной функции: D=-2,115×A-0,324×В-328,250×С, и при D равной или больше -82,67 прогнозируют отсутствие внутриутробного инфицирования плода, а при D меньше -82,67 прогнозируют внутриутробное инфицирование плода. Способ позволяет обоснованно и своевременно провести лечебно-профилактические мероприятия, направленные на профилактику внутриутробного инфицирования плода при простоте его исполнения. 2 пр.

Группа изобретений относится к медицине, а именно к лабораторной диагностике, и может быть использована для одновременного выявления представителей условных таксономических групп микроорганизмов, патогенных для человека и животных. Характеризуется использованием как минимум пяти иммунохроматографических стрип-тестов, размещенных в едином корпусе. При этом в первом и втором каналах корпуса устройства находятся стрип-тесты для выявления токсинов, в третьем канале - стрип-тест для выявления вегетативных форм бактерий, в четвертом - споровых форм бактерий, а в пятом - стрип-тест для выявления питательной среды культивирования вирусов и риккетсий. Тестирование ведут путем укладки корпуса иммунохроматических стрип-тестов в теплоизолирующий цефленовый пакет, состоящий из двух слоев цефлена, с теплоизолирующей прокладкой из пористого теплоизолирующего материала между ними, а корпус иммунохроматографических стрип-тестов внутри пакета нагревают источником постоянного тепла, причем отверстие пакета закрывают механическим зажимом и считают этот момент началом тестирования. Также предложено устройство для иммунохроматографического анализа. Группа изобретений позволяет увеличить производительность иммунохроматографического анализа, расширить температурный диапазон иммунохроматографического анализа от минус 20 до плюс 50°C, сократить время получения результата до 10 мин по сравнению с анализом при комнатной температуре (20 мин), при условии достижения одинаковой чувствительности, повысить чувствительность анализа по сравнению с анализом, проводимым при комнатной температуре. 2 н. и 7 з.п. ф-лы, 5 ил., 4 табл., 8 пр.
Изобретение относится к медицине и может быть использовано для выявления риска формирования Т-хелперного иммунодефицита у человека в условиях Арктики. Для этого осуществляют забор крови из вены и определяют общее количество лимфоцитов, малых лимфоцитов в лимфоцитограмме и содержание зрелых функционально активных Т-клеток CD3+. При содержании общего количества лимфоцитов меньше 1,5⋅109 кл/л и клеток CD3+ меньше 1,5⋅109 кл/л судят о риске формирования Т-хелперного дефицита. Изобретение позволяет выявить лиц, имеющих риск патологии, связанной с иммунодефицитом Т-хелперного звена иммунитета при профотборе для работы в экстремальных условиях Приарктического региона, а также с целью профилактики лиц, ведущих кочевой образ жизни. 6 пр.
Изобретение относится к медицине, а именно к трансплантации органов и клинической лабораторной диагностике, может быть использовано при ведении пациентов после трансплантации сердца для диагностики отторжения трансплантированного сердца. Сущность способа: в сыворотке крови определяют концентрацию PlGF-1 и при уровне P1GF-1 выше 5,33 пг/мл диагностируют острое клеточное отторжение. Преимущество изобретения заключается в обеспечении простоты, доступности, неинвазивности диагностики, сокращении времени ее проведения при одновременном достижении достоверного диагностического скрининга острого клеточного отторжения как в раннем, так и в отдаленном посттрансплантационных периодах у реципиентов сердца, а также в улучшении результатов трансплантации сердца, повышении выживаемости реципиентов путем своевременного определения показаний к внеплановой эндомиокардиальной биопсии, коронароангиографии и уточнения тактики ведения больных путем определения уровня концентрации PlGF-1 в сыворотке крови. 2 пр.

Изобретение относится к медицине, а именно к акушерству и гинекологии, и может быть использовано для выявления антиотцовских антител после иммунизации женщин с идиопатическим привычным выкидышем лимфоцитами полового партнера. Женщинам двукратно с интервалом в один месяц на 5-9 день менструального цикла внутрикожно вводят партнерские лимфоциты в однократной дозе 50 млн клеток в 10-12 точек ладонной части предплечья. Затем через две недели получают сыворотку крови, в которую добавляют в соотношении 1:1 выделенные из цельной периферической венозной крови лимфоциты (CD3+) партнера, полученные в градиенте плотности фиколл-верографин 1,077 г/см3 в течение 10 минут при 1600 g в соотношении 500 мкл фиколла к 1000 мкл крови, разведенной в 2 раза фосфатно-солевым раствором. Далее инактивированную женскую сыворотку с полученными лимфоцитами партнера инкубируют в течение 30 минут при температуре 37°С, после чего добавляют антитела к Fc-фрагменту иммуноглобулина G в разведении 1:4 с фосфатно-солевым раствором в объеме 1:1 суспензии лимфоцитов и инкубируют в течение 30 минут при температуре 4°С. Методом проточной цитометрии определяют процент партнерских лимфоцитов (CD3+), покрытых антителами к Fc-фрагменту иммуноглобулина G партнера, которые соответствуют уровню антиотцовских антител в сыворотке женщин. Изобретение позволяет отразить динамику появления антиотцовских антилейкоцитарных антител после иммунизации указанных женщин. 3 ил., 1 табл., 1 пр.

Изобретение относится к медицине и касается способа получения бифункционального аффинного сорбента для хроматографической очистки иммуноглобулинов флуоресцирующих путем иммобилизации неосмектина с гетерологичными антигенами, дающими перекрестные реакции с иммуноглобулинами, где к сорбенту вносят водорастворимый антиген, проводят экспозицию, отмывают от несвязавшегося антигена, доводят рН и проводят одномоментную очистку иммуноглобулинов флуоресцирующих от несвязавшегося ФИТЦ и гетерологичных антител с контролем иммунологических показателей готовых препаратов в РИФ. Изобретение обеспечивает эффективную очистку иммуноглобулинов флуоресцирующих от несвязавшегося красителя и гетерологичных антител. 2 пр., 3 табл.

Изобретение относится к медицине, а именно к клинической лабораторной диагностике. Сущность способа: осуществляют забор крови в пробирку, содержащую антикоагулянт, перемешивают и оставляют на 20 мин для свободного осаждения эритроцитов при комнатной температуре, после седиментации эритроцитов берут 0,5 мл лейкоцитарной взвеси и определяют в ней количество лейкоцитов любым способом (рутинным или автоматизированным), доводят ее концентрацию до величины 5*109 лейкоцитов/л дистиллированной водой, биологическую жидкость помещают в морозильную камеру при температуре -20°С до полного замораживания и используют ее после процесса размораживания для иммуноферментного определения спонтанной продукции цитокинов. Применение изобретения обеспечивает точность определения концентрации цитокинов методом ИФА, снижается индивидуальная вариабельность показателей. 1 табл.
Наверх